background image

JIDAM “An Official Journal of IDA - Madras Branch” ©2021. Available 
online

ISSN No: 2582-0559 

Volume No: 8, Issue No: 2

71

 

 REVIEW ARTICLE 

“GINGIVAL CREVICULAR FLUID AS A BIOMARKER OF 

PERIODONTAL DISEASE”- A NARRATIVE REVIEW 

Dr. Indumathi M, Dr.R.Shanmuga Priya, Dr.Sabitha Sudarsan, Dr.U.Arun Mozhi, Dr.R.Kadhiresan, 

Department of Periodontics and Oral Implantology, Sri Venkateswara Dental College and Hospital Off OMR road, 

near Navalur, Thalambur, Chennai, Tamilnadu, India 

DOI:1.37841/jidam_2021_V8_I

2_04

 

Address for Correspondence 

Dr.M.Indumathi,  

Post Graduate Student 

Department of Periodontics and Oral Implantology, 

Sri Venkateswara Dental College and Hospital 

 Off OMR road,near Navalur, Thalambur, Chennai-603103 

Email id: induvasan50@gmail.com 

Received: 

26.04.2021  First Published

31.05.2021 

Accepted: 

28.05.2021 

Published: 

27.06.2021 

ABSTRACT

 

Periodontitis  is  one  of  the  most  common  oral 

diseases in the world. Periodontitis when diagnosed early 
have  the  better  prognosis  for  the  individual  to  save  the 
tooth.  Diagnostic  markers  are  useful  to  indicate  the 
presence  of  a  disease  process  before  excessive  clinical 
damage  occurs.  One  such  main  source  of  biomarker  is 
gingival  crevicular fluid.   This  review  article  deals  with 
Gingival crevicular fluid(GCF) as a source of biomarkers 
for  periodontal  disease  progression  and  severity  which 
helps  in  diagnosis  and  prognosis  in  the  field  of 
Periodontology  and  also  details  about  available  various 
chairside diagnostic kits for the biomarkers.    

KEY  WORDS: 

Biomarkers,  Gingival  crevicular  Fluid, 

Periodontal Disease 


background image

JIDAM “An Official Journal of IDA - Madras Branch” ©2021. Available 
online

ISSN No: 2582-0559 

Jaishree et al: Lipoxins for Resolution of Inflammation 

Volume No: 8, Issue No: 2

72

 

INTRODUCTION: 

Periodontitis  is  one  of  the  most  prevalent  oral diseases 

in  the  world.  Approximately  5–20%  of  adults  worldwide 
suffer  from  severe  periodontitis  which  may  lead  to  tooth 
loss1.  Thus,  the  complex  interaction  between  the  pathogens 
and  the  host  response,  in  addition  to  environmental  and 
genetic  factors  is  considered  as  the  common  bacterial 
infection  in  the  world2.  Even  though  disease  initiation  is 
brought  about  by  specific  bacteria,  tissue  destruction 
subsequent to disease progression is caused by an imbalance 
between the protective and destructive host mechanisms that 
are  triggered  with  the  infection.  Further,  periodontitis  is 
thought  to  be  a  multifactorial  disease;  risk  factors  such  as 
uncontrolled  systemic  diseases  (e.g.  diabetes),  smoking  and 
genetic  predisposition  can  contribute  to  the  progression  of 
periodontal  disease

3

.  Currently,  most  medical  fields  are 

searching  for  useful  biological  diagnostic  markers  that  can 
indicate  the  presence  of  a  disease  process  before  extensive 
clinical damage has occurred. As far Dentistry is concerned, 
various  fluids  in  the  oral  cavity  are  being  considered  as  a 
source of diagnostic biomarkers in predicting disease and its 
progression. 

GCF AS A DIAGNOSTIC TOOL: 

Early 

diagnosis 

and 

treatment 

of 

progressive 

Periodontitis  is  important  because  of  the  irreversible  nature 
of  this  disease

4

.  .One  of  the  goal  of  periodontal  diagnostic 

procedures  is  to  provide  useful  information  to  the  clinician 
regarding  the  current  periodontal  disease  type,  location  and 
severity.  These  findings  serve  as  a  basis  for  treatment 
planning  and  provide  essential  data  during  periodontal 
maintenance and disease monitoring phases of treatment.  

There is a need for the development of new diagnostic 

tests  that  can  detect  the  presence  of  active  disease,  predict 
future  disease  progression  and  evaluate  the  response  to 
periodontal  therapy,  thereby  improving  the  clinical 
management  of  periodontal  patients.  Advances  in  oral  and 
periodontal  disease  diagnostic  research  are  moving  toward 
methods  whereby  periodontal  risk  can  be  identified  and 
quantified by objective measures such as biomarkers. 

The  collection  of  GCF  is  a  minimally  invasive 

procedure  and  the  analysis  of  specific  constituents  in  the 
GCF  provides  a  quantitative  biochemical  indicator  for  the 
evaluation  of  the  local  cellular  metabolism  that  reflects  a 
person’s  periodontal  health  status.  Since  GCF  is  an 
inflammatory  exudate  that  reflects  ongoing  events  in  the 
periodontal  tissues  that  produce  it,  an  extensive  search  has 
been made for GCF components that might serve as potential 

diagnostic  or  prognostic  markers  for  the  progression  of 
periodontal disease. (Fig 1) 

FIGURE 1: Gingival crevice fluid – a window to periodontal 

disease. Gingival crevice fluid is composed of substances 

derived from serum, leukocytes, bacteria, activated epithelial 

cells, connective tissue cells, and bone cells. 

Several  techniques  have  been  employed  for  the 

collection  of  GCF  and  the  technique  chosen  depends  upon 
the  objectives  of  the  stud,  as  each  technique  has  its  own 
advantages  and  disadvantages.  The  methods  of  collection 
may be broadly divided into the intracrevicular and the extra 
crevicular techniques. The former depends on the strip being 
inserted  into  the  gingival  crevice,  whereas  in  the  latter,  the 
strips  are  overlaid  on  the  gingival  crevice  region  in  an 
attempt to minimize trauma.  

BIOMARKERS IN GCF: 

Host-derived enzymes and their inhibitors 

Aspartate aminotransferase

It  is  a  cytoplasmic  enzyme  that  is  released  upon  cell 

death and elevated levels of total enzyme activity were found 
to  be  strongly  associated  with  active  disease  sites.[5]  Sites 
with  severe  gingival  inflammation  and  progressive 
attachment loss demonstrate marked elevation in AST levels 
in GCF samples

6

Alkaline Phosphatase


background image

JIDAM “An Official Journal of IDA - Madras Branch” ©2021. Available 
online

ISSN No: 2582-0559 

Jaishree et al: Lipoxins for Resolution of Inflammation 

Volume No: 8, Issue No: 2

73

 

It is a membrane-based glycoprotein produced by many 

cells  within  the  area  of  the  periodontium  and  gingival 
crevice.  Alkaline  phosphatase  is  thought  to  play  a  role  in 
bone metabolism and mineralization and collagen formation. 
The  activity  of  alkaline  phosphatase  has  shown  to  be 
correlated  with  pocket  depth  and  the  percentage  of  bone 
loss

7

, this activity was found to be 20 times greater in GCF 

from active sites than in serum. 

Acid phosphatase

It  has  been  widely  investigated  amongst  the  lysosomal 

enzymes  and  has  often  been  used  as  a  lysosomal  marker. 
Quantitative  analysis  confirmed  that  gingival  fluid  contains 
10-20  times  more  acid  phosphatase  than  serum.  The  host
sources  are  the  PMNs  and  desquamating  epithelial  cells8.
About  60%  of  the  total  acid  phosphatase  in  whole  gingival
fluid originates from bacteria. The levels of acid phosphatase
do  not  correlate  with  measurements  of  disease  severity  or
activity.

β –Glucuronidase

It  is  one  of  the  hydrolases  found  in  the  azurophilic  or 

primary  granules  of  PMNs.  The  enzyme  is  liberated  from 
macrophages,  fibroblasts  and  endothelial  cells  of  healthy  or 
chronically  inflamed  gingival  tissues.  The  level  of  β-
glucuronidase  correlates  significantly  with  attachment  loss 
that  may  subsequently  occur  in  individuals  with  adult 
periodontitis

9

Elastase

Neutrophil elastase is a serine proteinase confined to the 

azurophil  granules  of  PMNs  which  are  analogous  to 
lysozymes.  It  acts  upon  elastin,  proteoglycans,  hemoglobin, 
fibrinogen and collagen. Leukocyte elastase degrades mature 
collagen  fibers.  Amounts  of  GCF  elastase  are  greater  in 
periodontitis patients than healthy controls

10

Macroglobulins (Alpha 2,Beta 2):

Macroglobulins  play  a  major  role  in  the  immune 

system. They have the ability to inactivate varied microboita, 
thereby  protecting  oral  tissues.  Alpha  2M  has  been 
associated  with  tissue  destruction  whereas  Beta  2M  plays  a 
role  in  T  and  B  lymphocytes  response.  Inflammed  tissues 
release  Alpha  2M  and  Beta  2M  to  stall  inflammation  and 
negate proliferation of micro-organisms. 

Cathepsins:

It  is  an  enzyme  belonging  to  the  class  of  cysteine 

proteinases. In GCF, macrophages are the main producers of 
cathepsin  B11.  GCF  concentrations  of  cathepsin  B  were 
found to be elevated in patients with periodontal disease, but 
lower  in  patients  with  gingivitis

12

.  Cathepsin  D,  a  carboxy 

endopeptidase,  is  present  at  high  concentration  in  inflamed 
tissues.  Its  concentration  is  found  to  be  10  times  higher  in 
GCF  during  periodontal  destruction.  Cathepsin  G  is  serine 
endopeptidase contained in the azurophil granules of PMNs. 
It  hydrolyzes  hemoglobin  and  fibrinogen,  casein,  collagen 
and  proteoglycans.  Measurements  of  cathepsin  and  neutral 
proteases,  have  also  shown  a  relationship  to  the  severity  of 
inflammation  but  no  association  with  disease  activity  has 
been demonstrated. 

Dipeptidyl Peptidases (DPP)

They are derived from lymphocytes, macrophages, and 

fibroblasts.  DPP  II  has  been  localised  to  macrophages  and 
fibroblasts  in  gingival  tissue  and  in  cells  in  GCF13.  DPP 
Eley and Cox, monitored GCF levels of DPP II and IV and 
reported  higher  levels  of  both  enzymes  in  sites  with  rapid 
and  gradual  attachment  loss  than  in  paired  sites  without 
attachment loss

14

Collagenase-2 (MMP-8)

MMP-8  is  also  called  collagenase-2.  It  is  predominant 

collagen  in  GCF.  Increased  levels  of  MMP-8  in  GCF  is 
associated  with  severity  of  periodontitis.  It  is  released  from 
PMNs  during  maturation.  Increased  levels  of  MMP-8  are 
signify  conversion  of  gingivitis  into  periodontitis.  No 
associations  are  found  between  MMP-8  levels  and  a  bone 
loss. It was found that 18-fold increase of MMP-8 in patients 
experiencing  active  periodontal  tissue  breakdown  as 
compared with patients under stable condition

15

Gelatinase (MMP-9)

Gelatinase 

(MMP-9), 

another 

member 

of 

the 

collagenase family, is produced by neutrophils and degrades 
collagen  extracellular  ground  substance.  There  is  a  twofold 
increase  in  mean  MMP-9  levels  is  reported  in  patients  with 
recurrent attachment loss.  

Collagenase-3 (MMP-13)

Collagenase-3,  referred  to  as  MMP-13,  is  another 

collagenolytic  MMP  with  exceptionally  wide  substrate 
specificity.  The  expression  of  MMP13  is  specifically 
induced  in  undifferentiated  epithelial  cells  during  chronic 
inflammation  due  to  exposure  to  cytokines  and  collagen. 
MMP-13  has  also  been  implicated  in  peri-implantitis. 
Elevated  levels  of  both  MMP-13  and  MMP-8  are  correlate 


background image

JIDAM “An Official Journal of IDA - Madras Branch” ©2021. Available 
online

ISSN No: 2582-0559 

Jaishree et al: Lipoxins for Resolution of Inflammation 

Volume No: 8, Issue No: 2

74

 

with  irreversible  peri-implant  vertical  bone  loss  around 
loosening dental implants

16

Tissue inhibitors of matrix metalloproteinases
(TIMPs)

They  are  locally  produced  and  their  main  role  is 

defending  connective  tissues  in  the  very  local  area  around 
the  cell  from  which  metalloproteinases  are  secreted.  The 
tissue  degradation  is  further  thought  to  be  induced  by  an 
imbalance  between  MMPs  and  TIMP

17

.  The  mean  amounts 

of  SL  and  TIMP  in  diseased  sites  (gingivitis  and 
periodontitis) is significantly higher than the mean amount of 
these GCF components in healthy sites

18

Tissue Breakdown Products 

Glycosaminoglycans

Proteoglycans  have  a  core  protein  on  which  one  or 

more heteropolysaccharides (called glycosaminoglycans) are 
bound  covalently.  In  general,  chondroitin-4-sulfate  is  the 
most  common  glycosaminoglycan  in  the  periodontium. 
Chondroitin-4-sulfate 

appears 

to 

be 

the 

major 

glycosaminoglycan  in  untreated  chronic  periodontitis  sites, 
as  shown  in  both  animal  and  human  studies.  Elevated 
glycosaminoglycan  concentrations  were  also  found  in 
aggressive  periodontitis,  and  associations  have  been  made 
with  periodontal  pathogens  such  as  P.  gingivalis

19

.  It  is 

elevated in peri implantitis patient. 

Hydroxyproline

It  is  a  characteristic  amino  acid  and  is  a  major 

component of the collagen. Hydroxyproline and proline play 
key  role  for  maintaining  collagen  stability.  They  permit  the 
sharp  twisting  of  the  collagen  helix.  Thus  it  is  a  major 
breakdown product of collagen present in the GCF

20

Fibronectin fragments

It  is  one  of  the  components  of  the  extracellular  matrix 

(ECM)  of  periodontal  tissue

21

  its  main  role  is  in  cell 

adhesion  and  proliferation,  which  explains  its  potential  use 
in  regenerative  strategies.  The  presence  in  GCF  would 
indicate  fibronectin  fragmentation  due  to  tissue  destruction 
and not simply inflammation

22

Connective tissue and Bone proteins 

Osteonectin

Also  referred  to  as  secreted  protein  acidic  and  rich  in 

cysteine  and  basement  membrane  protein  (BM-40), 
osteonectin is a single-chain polypeptide that binds strongly 

to  hydroxyapatite  and  other  extracellular  matrix  proteins 
including collagens. Because  of its affinity for collagen and 
hydroxylapatite, osteonectin has been implicated in the early 
phases of tissue mineralization

23

.  

Osteocalcin

It is a small calcium-binding protein of bone and is the 

most  abundant  non  collagenous  protein  of  mineralized 
tissues

24

.  Osteocalcin  is  predominantly  synthesized  by 

osteoblasts  and  it  has  an  important  role  in  both  bone 
resorption  and  mineralization  [25].  Elevated  serum 
osteocalcin levels have been shown in periods of rapid bone 
turnover.  Serum  osteocalcin  is  presently  considered  a  valid 
marker of  bone  turnover  when  resorption  and formation  are 
coupled,  and  a  specific  marker  of  bone  formation  when 
formation and resorption are uncoupled. 

Type I collagen peptides:

The  most  common  extracellular  matrix  component  is 

collagen,  which  is  synthesized  in  a  pro-form  containing  a 
terminal propeptide. Collagen I carboxy-terminal propeptide 
and  collagen  III  amino-terminal  propeptide  were  detectable 
in the GCF of patients with periodontitis, but not in healthy 
subjects, suggesting that turnover is higher in inflamed sites. 
The  GCF  levels  of  these  collagens  are  increased  after 
nonsurgical  periodontal  treatment  and  return  to  baseline 
levels after a few days.  

Receptor activated nuclear factor-kappa B ligand
(RANKL):

Receptor  activated  nuclear  factor-kappa  B  ligand 

(RANKL)  was  another  frequently  reported  biomarker  that 
was  reported  in  six  studies.  These  studies,  except  (Inanc  et 
al.,  2014)

26

  reported  an  increased  concentration  of  RANKL 

in  GCF  of  patients  with  periodontitis  versus  that  of  control 
patients.  

Osteopontin (OPN):

It is a single-chain polypeptide. In bone matrix, OPN is 

highly concentrated at sites where osteoclasts are attached to 
the  underlying  mineral  surface,  that  is,  the  clear  zone 
attachment  areas  of  the  plasma  membrane.  In  2006, 
published  findings  from  an  investigation  of  GCF  OPN  that 
its  concentrations  increased  proportionally  with  the 
progression  of  disease  and  when  nonsurgical  periodontal 
treatment was provided, its levels were significantly reduced. 

Laminin:

It  is  a  900-kDa  glycoprotein  found  in  all  basement 


background image

JIDAM “An Official Journal of IDA - Madras Branch” ©2021. Available 
online

ISSN No: 2582-0559 

Jaishree et al: Lipoxins for Resolution of Inflammation 

Volume No: 8, Issue No: 2

75

 

membranes. During gingival inflammation, neutrophils leave 
the  blood  vessels  and  migrate  through  the  connective  tissue 
towards  the  inflammatory  lesion,  and  some  of  them  invade 
the gingival crevice. 

 Higher amounts of laminin in GCF from patients with 

periodontitis suggest the presence of hyperactive neutrophils 
during 

the 

transmigration 

process 

through 

the 

endothelium/epithelium

27

Calprotectin

It  is  a  36-kDa  protein  composed  of  a  dimeric  complex

of  8-  and  14-kDa  subunits.  It  also  plays  a  role  in  immune 
regulation  through  its  ability  to  inhibit  immunoglobulin 
production  and  acts  as  a  proinflammatory  protein  for 
neutrophil recruitment and activation. 

 

The expression of calprotectin from inflammatory cells 

appears  to  offer  protection  of  the  epithelial  cells  against 
binding and invasion by P. gingivalis. In periodontal disease, 
it appears to improve resistance to P. gingivalis by boosting 
the  barrier  protection  and  innate  immune  functions  of  the 
gingival epithelium

28

Hemoglobin β-chain peptides

Two peptides derived from the hemoglobin (Hb) are β-

chain  decapeptide  and  a  dodecapeptide.  They  are 
pharmacologically  and  physiologically  active,  and  act  as 
inflammatory  mediators

29

.  Both  peptides  may  also  act  as 

substrates  of  proline-specific  peptidases  studied  in 
treponemes  isolated  from  the  human  subgingival  dental 
plaque.  These  two  particular  Hb  β-chain  sequences  were 
present  in  GCF  and  successful  periodontal  therapy  will 
reduce the levels of these peptides

30

Pyridinoline crosslinks (ICTP)

They represent a class of collagen-degrading molecules 

that include pyridinoline, deoxypyridinoline, N-telopeptides, 
and  C-telopeptides31.  Subsequent  to  osteoclastic  bone 
resorption  and  collagen  matrix  degradation  these  molecules 
are  released  into  the  circulation.  Given  their  specificity  for 
bone  resorption,  pyridinoline  cross-links  represent  a 
potentially  valuable  diagnostic  aid  in  periodontics,  because 
biochemical  markers  specific  for  bone  degradation  may  be 
useful  in  differentiating  the  presence  of  gingival 
inflammation from active periodontal and peri-implant bone 
destruction

32

Inflammatory mediators and host response modifiers: 

Interleukin 1ß:

Studies  reported  a  presence  of  IL-1β  in  diseased  sites, 

low  levels  of  IL-1β  in  healthy  peri-implant  sites, 
significantly  high  levels  of  IL-1β  in  periodontal  disease 
patients  as  compared  to  controls  and  a decrease  in  the  level 
of  IL-1β  with  an  improvement  in  clinical  parameters 
following treatment. 

Prostaglandin E2:

Arachidonic acid metabolites like PGE2 play a key role 

in  the  progression  of  periodontal  destruction.  PGE2,  a 
metabolite  of  cyclooxygenase  pathway,  is  considered  to 
induce  fibroblasts  and  osteoblasts  activity  for  the  synthesis 
of  MMPs,  IL-1b  and  other  cytokines.  PGE2  levels  are 
enhanced  and  have  been  correlated  with  the  severity  of 
periodontal disease.  

PERI IMPLANT CREVICULAR FLUID (PICF) IN 
PERI IMPLANTITIS: 

Bone Markers:  (RANK, RANKL)

Soluble  RANKL  and  OPG  levels  were  evaluated  in 84 

samples  of  PICF  from  implants  showing  different  peri-
implant tissue clinical conditions without demonstrating any 
correlation  between  these  levels  and  the  studied  clinical 
outcomes

33

However, one study demonstrated the presence of OPG 

in  79%  of  the  PICF  samples  and  showed  a  positive 
correlation between BOP, while RANKL was only detected 
in  12%  of  PICF  samples  and  did  not  show  any  positive 
correlation with clinical inflammation. 

Enzymes: (MMP,CATHEPSIN K)

CatK is a known marker of bone turnover due to its key 

role  in  remodeling  and  cartilage  breakdown  in  bone  by 
hydrolyzing  extracellular  bone  matrix  proteins.  CatK  is 
highly  and  quite  selectively  expressed  in  active,  resorbing 
osteoclasts.  This  suggests  its  role  in  the  pathogenesis  of  PI. 
CatK  levels  were  evaluated  in  PICF  to  assess  the  levels  of 
CatK  in  healthy  implants  and  PI  in  order  to  correlate  these 
findings  with  clinical  parameters34.  The  authors  concluded 
that  increased  levels  of  MMP-8  and  IL-1_  in  PICF  or  GCF 
may  be  associated  with  inflammation  around  teeth  and 
implants  while  lower  levels  of  MMP-1/TIMP1  may  be  an 
indicator of disease progression around implants 

CHAIRSIDE DIAGNOSTIC KITS: - 


background image

JIDAM “An Official Journal of IDA - Madras Branch” ©2021. Available 
online

ISSN No: 2582-0559 

Jaishree et al: Lipoxins for Resolution of Inflammation 

Volume No: 8, Issue No: 2

76

 

Biochemical tests: (Fig-2)

Microbial tests: (Fig-3)

Genetic Test

The  Periodontitis  Susceptibility  Trait  test  (PST)  is  the 

test which identifies the genetic predisposition of the patient 
for  periodontitis  by  detecting  the  polymorphism  in  IL-1 
gene.  Polymorphism  in  two  positions  of  IL-1  i.e  position  -
889  and  +  3953  has  been  associated  with  periodontal 
disease35.  Within  both  polymorphisms  allele  1  harbors  a 
cytidin  (C),  whereas  allele  2  carries  a  thymidin  (T)  at  the 
respective  position.  In  particular,  when  both  genes  carry 
allele  2  a  strong  over-production  of  the  local  inflammatory 
mediator, interleukin-1 will occur.  

Implant Safe Rapid Test Kit

The  ImplantSafe®  device  may  be  useful  in 

differentiating  active  from  inactive  periodontal  and  peri-
implant  sites  easily,  quickly  and  inexpensively  with  high 
sensitivity  and  specificity  (sensitivity  of  90%  and  a 
specificity  of  70%–85%) 

[36]

.   Elevated  levels  of  MMP-8  in 

PICF  are  associated  with  peri-implant  inflammation  while 

low  MMP-8  levels  (<20  ng/mL)  indicate  healthy  peri-
implant  tissues.  Pathologically  elevated  levels  of  MMP-8 
(>20 ng/mL) can be detected by a quantitative MMP-8 chair-
side device, ImplantSafe®

37.

 

CONCLUSION: 

GCF  as  a  diagnostic  and  prognostic  tool  has  been 

explored  since  the  initial  studies  on  GCF  which  aimed  to 
demonstrate  that  the  flow  of  gingival  fluid  was  sufficiently 
indicative  of  the  inflammatory  state  of  the  periodontal 
tissues. Over time, research methods have evolved to enable 
the  assessment  of  the  transition  phase  between  health  and 
inflammation  at  the  gingival  level  to  disease  progression. 
More  recently,  metabolomic  analysis  that  measure  small 
degradation  molecules  associated  with  host  and  bacterial 
metabolism  show  promise.  There  may  be  many  different 
cytokine  inflammatory  pathways  or  microbial  stimuli  that 
are  associated  with  the  causal  pathway  of  periodontal 
pathogenesis. 

Prospective  healthcare  is  a  new  approach  that 

incorporates  all  the  power  of  current  disease-oriented 
medicine  but  is  based  on  the  concept  of  strategic  health 
planning,  a  proactive,  prospective  approach  to  care.  In  this 
system, individuals are evaluated to determine their baseline 
risk  for  a  specific  disease,  their  current  health  status,  and 
their  likelihood  of  developing  specific  clinical  problems 
given  their  risks.  As  mentioned  before,  allocation  of 
resources  to  prevent  periodontitis/peri-implantitis  would  be 
optimized  and  may  help  to  reduce  costs  if  diagnostic 
information  would  assist  in  identifying  susceptible  patients 
and  help,  providing  more  specific  prevention/treatment 
strategies for high-risk and low-risk patients. 

ACKNOWLEDGEMENT 

‘a’  designed  the  study,  searched  relevant  articles  and 
collected  data.  ‘a’  and  ‘b’  participated  in  the  data 
interpretation  and  analysis.  ‘a’  and  ‘c’  prepared  the 
manuscript. All the three authors read and approved the final 
manuscript. 

CONFLICTS OF INTEREST

 

There are no conflicts of interest. 

REFERENCES: 

1.

Petersen,  P.  E.,  Bourgeois,  D.,  Ogawa,  H.,  Estupinan-
Day,  S.,  &  Ndiaye,  C.  The  global  burden  of  oral
diseases and risks to oral health. Bulletin of the World


background image

JIDAM “An Official Journal of IDA - Madras Branch” ©2021. Available 
online

ISSN No: 2582-0559 

Jaishree et al: Lipoxins for Resolution of Inflammation 

Volume No: 8, Issue No: 2

7

7

 

Health Organization 2005;34:68-71 

2.

Finoti, L. S., Nepomuceno, R., Pigossi, S. C., Corbi, S.
C., Secolin, R., & Scarel-Caminaga, R. M. Association
between  interleukin-8  levels  and  chronic  periodontal
disease:  A  PRISMA-compliant  systematic  review  and
meta-analysis. Medicine 2017;34:24-27

3.

Sahingur,  S.  E.,  &  Cohen,  R.  E..  Analysis  of  host
responses 

and 

risk 

for 

disease 

progression.

Periodontology, 2000;2004:84-86

4.

Ira  B.  Lamster  &  John  T  Grbic,  Diagnosis  of
periodontal disease based on analysis of host response.
Periodontology 2000; 1995: 83-99.

5.

Persson  GR,  DeRouen  TA.  Relationship  between
gingival 

crevicular 

fluid 

levels 

of 

aspartate

aminotransferase and active tissue destruction in treated
chronic 

periodontitis 

patients. 

Periodontal

Res.1990;25:81–87.

6.

Chambers  DA,  Imrey  PB.  A  longitudinal  study  of
aspartate aminotransferase in human gingival crevicular
fluid. J Periodontal Res. 1991; 26:65–74.

7.

Ishikawa  I,  Cimasoni  G.  Alkaline  phosphatase  in
human 

gingival 

fluid 

and 

its 

relation 

to

periodontitis.Arch Oral Biol. 1970;15:1401–1404.

8.

Baggiolini  M,  Dahinden  CA.  CC  chemokines  in
allergic  inflammation.  Immunol  Today.  1994;15:127–
133.

9.

Lange  DE,  Schroeder  HE.  Structural  localization  of
lysosomal enzymes in gingival sulcus cells. J Dent Res.
1972;51:272–278.

10. Lamster  IB,  Oshrain  RL.  Correlation  analysis  for

clinical  and  gingival  crevicular  fluid  parameters  at
anatomically  related  gingival  sites.  J  Clin  Periodontol.
1991;18:272–277.

11. Ohlsson  K,  Olsson  I.  Olsson  .  Acta  Odontol  Scand.

1973;31:51–59.

12. Kennett  CN,  Cox  SW.  Investigations  into  the  cellular

contribution  to  host  tissue  proteases  and  inhibitors  in
gingival 

crevicular 

fluid. 

Clin 

Periodontol.

1997;24:424–431.

13. Kunimatsu  K,  Mataki  S.  A  cross-sectional  study  on

osteocalcin  levels  in  gingival  crevicular  fluid  from
periodontal patients. J Periodontol. 1993;64:865–869.

14. Kennett  CN,  Cox  SW.  Investigations  into  the  cellular

contribution  to  host  tissue  proteases  and  inhibitors  in
gingival 

crevicular 

fluid. 

Clin 

Periodontol.

1997;24:424–431.

15. Eley  BM,  Cox  SW.  Correlation  between  gingival

crevicular  fluid  dipeptidyl  peptidase  II  and  IV  activity
and  periodontal  attachment  loss.  A  2-year  longitudinal
study 

in 

chronic 

periodontitis 

patients. 

Oral

Dis.1995;1:201–213.

16. Pawar  D,  Mehta  D.  Effect  of  phase-1  periodontal

therapy  on  GCF  levels  of  MMP-3  and  MMP-13  in
chronic  periodontitis  patients.  J  Investig  Clin  Dent.

2015;6:118–124. 

17. Skurska  A.  Effect  of  NSPT  on  the  concentration  of

MMP-8  and  MMP-9  in  GCF  in  patients  with  chronic
periodontitis. BMC Oral Health. 2015;15:63.

18. Buchmann  R,  Hasilik  A.  Amplified  crevicular

leukocyte  activity  in  aggressive  periodontal  disease.  J
Dent Res. 2002;81:716–721.

19. Nauseef WM. How human neutrophils kill and degrade

microbes: 

an 

integrated 

view. 

Immunol

Rev.2007;219:88–102.

20. Smith  AJ,  Wade  W.  The  relationship  between

microbial  factors  and  gingival  crevicular  fluid
glycosaminoglycans in human adult periodontitis. Arch
Oral Biol. 1997;42:89–92.

21. Akalin FA, Sengün D. Hydroxyproline and total protein

levels  in  gingiva  and  gingival  crevicular  fluid  in
patients  with  juvenile,  rapidly  progressive,  and  adult
periodontitis. J Periodontol. 1993;64:323–329.

22. Morrison  PR,  Edsall  JT.  Preparation  and  properties  of

serum  and  plasma  proteins;  the  separation  of  purified
fibrinogen  from  fraction  I  of  human  plasma.  J  Am
Chem Soc. 1948;70:3103–3108.

23. Termine  JD,  Kleinman  HK.  Osteonectin,  a  bone-

specific 

protein 

linking 

mineral 

to 

collagen.

Cell.1981;26:99–105. [PubMed]

24. Nishijima, Y., Yamaguchi, M., Kojima, T., Aihara, N.,

Nakajima,  R.,  &  Kasai,  K.  (2006).  Levels  of  RANKL
and opg in gingival crevicular fluid during orthodontic
tooth  movement  and  effect  of  compression  force  on
releases  from  periodontal  ligament  cells  in  vitro.
Orthodontics and Craniofacial Research, 9(2), 63–70.

25. Figueredo  CM,  Gustafsson  A.  Increased  amounts  of

laminin  in  GCF  from  untreated  patients  with
periodontitis. J Clin Periodontol. 2000;27:313–318.

26. Nisapakultorn  K,  Ross  KF.  Calprotectin  expression  in

vitro  by  oral  epithelial  cells  confers  resistance  to
infection  by  Porphyromonas  gingivalis.  Infect  Immun.
2001;69:4242–4247.

27. Walsh DA, Wharton J. Species and tissue specificity of

vasoactive 

regulatory 

peptides. 

Int 

Tissue

React.1993;15:109–124.

28. Mäkinen KK, Sewon L. Analysis in gingival crevicular

fluid  of  two  oligopeptides  derived  from  human
hemoglobin beta-chain. J Periodontal Res. 1996;31:43–
46.

29. Calvo  MS,  Eyre  DR.  Molecular  basis  and  clinical

application 

of 

biological 

markers 

of 

bone

turnover.Endocr Rev. 1996;17:333–368.

30. Mäkinen KK, Sewon L. Analysis in gingival crevicular

fluid  of  two  oligopeptides  derived  from  human
hemoglobin beta-chain. J Periodontal Res. 1996;31:43–
46.

31. Calvo  MS,  Eyre  DR.  Molecular  basis  and  clinical

application 

of 

biological 

markers 

of 

bone


background image

JIDAM “An Official Journal of IDA - Madras Branch” ©2021. Available 
online

ISSN No: 2582-0559 

Jaishree et al: Lipoxins for Resolution of Inflammation 

Volume No: 8, Issue No: 2

78

 

turnover.Endocr Rev. 1996;17:333–368. 

32. Giannobile  WV.  Periodontal  tissue  engineering  by

growth factors. Bone.J Periodontol  1996;19:23S–37S.

33. Monov,  G.;  Strbac,  G.D.;  Baron,  M.;  Kandler,  B.;

Watzek,  G.;  Gruber,  R.  Soluble  RANKL  in  crevicular
fluid  of  dental  implants:  A  pilot  study.  Clin.  Implant.
Dent. Relat Res. 2006, 8, 135–141.

34. Rakic,  M.;  Lekovic,  V.;  Nikolic-Jakoba,  N.;  Vojvodic,

D.;  Petkovic-Curcin,  A.;  Sanz,  M.  Bone  loss
biomarkers  associated  with  peri-implantitis.  A  cross-
sectional  study.  Clin.  Oral  Implant.  Res.  2013,  24,
1110–1116.

35. Greenstein  G,  Hart  TC.  A  critical  assessment  of

interleukin‑1 (IL‑1) genotyping when used in a genetic
susceptibility  test  for  severe  chronic  periodontitis.  J
Periodontol 2002;73:231‑47

36. Al-Majid, 

A.; 

Alassiri, 

S.; 

Rathnayake, 

N.;

Tervahartiala,  T.;  Gieselmann,  D.R.;  Sorsa,  T.  Matrix
Metalloproteinase-8 as an Inflammatory and Prevention
Biomarker 

in 

Periodontal 

and 

Peri-Implant

Diseases.Int. J. Dent. 2018, 2018, 7891323.

37. Mikx 

FH, 

Renggli 

HH. 

How 

sensible 

are

bacteriological  tests  in  periodontology?    Ned  Tijdschr
Tandheelkd. 1994;101:484-88.